Journal Health of Woman. 2026. 3(184): 80-86. doi: 10.15574/HW.2026.3(184).8086
Голяновський В. О.¹, Загородня О. С.², Марунчак М. І.¹, Говсєєв Д. О.^1,2
1КНП «Перинатальний центр міста Києва», Україна
²Національний медичний університет імені О.О. Богомольця, м. Київ, Україна

Для цитування: Голяновський ВО, Загородня ОС, Марунчак МІ, Говсєєв ДО. (2026). Остеопонтин у патогенезі дистресу плода у роділь із ожирінням. Український журнал Здоров'я жінки. 3(184): 80-86. doi: 10.15574/HW.2026.3(184).8086.
Стаття надійшла до редакції 25.03.2026 р.; прийнята до друку 01.06.2026 р.

Проблеми малоінформативної діагностики причин та ризиків дистресу плода, особливо у жінок із ожирінням, потребують визначення надійного маркера, який у перспективі дозволив би прогнозувати дистрес плода.
Мета – визначити патогенетичне значення змін венозної концентрації остеопонтину у венозній крові роділь із дистресом плода та ожирінням.
Матеріал та методи. Обстежено 214 роділь, яких розподілено на 4 групи: 63 пацієнтки з ожирінням та критеріями дистресу плода (І група), 43 пацієнтки з ожирінням без ознак дистресу плода (ІІ група), 51 роділля без ожиріння та з критеріями дистресу плода (ІІІ група), 57 роділля без ожиріння та без ознак дистресу плода (IV група). У всіх роділь визначали рівень остеопонтину у венозній крові, а після розродження досліджували показники кислотно-лужної рівноваги крові з вени пуповини.
Результати. Концентрація остеопонтину в усіх жінок із ожирінням вірогідно перевищувала показник здорових роділь. Для І групи встановлено сильну негативну кореляцію між вмістом остепонтину та pH пуповинної крові, а у групі ІІ показники свідчили про відсутність такої залежності. Між вмістом остеопонтину та надлишком основ (ВЕ) виявлено сильну кореляцію в І групі та значну – в групі ІІІ. ROC-аналіз продемонстрував прийнятну прогностичну цінність концентрації остеопонтину, як маркера дистресу плода у роділь із ожирінням.
Висновки. Рівень остеопонтину в роділь асоціюється з ожирінням та ознаками порушення стану плода. У жінок з ожирінням і дистресом плода виявлено зв'язок між підвищеним рівнем остеопонтину та показниками кислотно-лужної рівноваги пуповинної крові, що дозволяє розглядати остеопонтин, як потенційний допоміжний біомаркер метаболічного стресу плода.
Дослідження виконано відповідно до принципів Гельсінської декларації. На проведення дослідження отримано інформовану згоду жінок.
Автори заявляють про відсутність конфлікту інтересів.
Ключові слова: дистрес плода, остеопонтин, ожиріння, pH пуповинної крові. 

ЛІТЕРАТУРА

1. Chen J, Zeng P, Gong L, Zhang X, Ling Z, Bi K et al. (2022, Dec 20). Osteopontin Exacerbates High-Fat Diet-Induced Metabolic Disorders in a Microbiome-Dependent Manner. mBio. 13(6): e0253122. https://doi.org/10.1128/mbio.02531-22; PMid:36300928 PMCid:PMC9765578

2. Cicekli I, Saglam D, Takar N. (2023, Jul 22). A New Perspective on Metabolic Syndrome with Osteopontin: A Comprehensive Review. Life (Basel).;13(7):1608. https://doi.org/10.3390/life13071608; PMid:37511983 PMCid:PMC10381599

3. Daniele G, Winnier D, Mari A, Bruder J, Fourcaudot M, Pengou Z et al. (2018, Feb). The potential role of the osteopontin-osteocalcin-osteoprotegerin triad in the pathogenesis of prediabetes in humans. Acta Diabetol. 55(2): 139-148. https://doi.org/10.1007/s00592-017-1065-z; PMid:29151224 PMCid:PMC5816090

4. Голяновський ВО, Зохнюк НМ, Матата МВ, Говсєєв ДО. (2025). Материнські фактори ризику тяжкої асфіксії новонародженого. Український журнал Перинатологія і Педіатрія. 4(104): 10-16. doi: 10.15574/PP.2025.4(104).1016.

5. Huang J, Zhou X, Xu Y, Yu C, Zhang H, Qiu J et al. (2025, Jan 10). Shen Qi Wan regulates OPN/CD44/PI3K pathway to improve airway inflammation in COPD: Network pharmacology, bioinformatics, and experimental validation. Int Immunopharmacol. 144: 113624. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2024.113624; PMid:39577218

6. Kahles F, Findeisen HM, Bruemmer D. (2014, Mar 22). Osteopontin: A novel regulator at the cross roads of inflammation, obesity and diabetes. Mol Metab. 3(4): 384-393. https://doi.org/10.1016/j.molmet.2014.03.004; PMid:24944898 PMCid:PMC4060362

7. Kang WS, Choi JS, Shin YJ, Kim HY, Cha JH, Lee JY et al. (2008, Sep 4). Differential regulation of osteopontin receptors, CD44 and the alpha(v) and beta(3) integrin subunits, in the rat hippocampus following transient forebrain ischemia. Brain Res. 1228: 208-216. https://doi.org/10.1016/j.brainres.2008.06.106; PMid:18638458

8. Lang F, Li Y, Yao R, Jiang M. (2025, Apr 16). Osteopontin in Chronic Inflammatory Diseases: Mechanisms, Biomarker Potential, and Therapeutic Strategies. Biology (Basel). 14(4): 428. https://doi.org/10.3390/biology14040428; PMid:40282293 PMCid:PMC12024743

9. Lu C, Kumar PA, Sun J, Aggarwal A, Fan Y, Sperling MA et al. (2013, May 31). Targeted deletion of growth hormone (GH) receptor in macrophage reveals novel osteopontin-mediated effects of GH on glucose homeostasis and insulin sensitivity in diet-induced obesity. J Biol Chem. 288(22): 15725-15735. https://doi.org/10.1074/jbc.M113.460212; PMid:23595986 PMCid:PMC3668731

10. Malin GL, Morris RK, Khan KS. (2010, May 13). Strength of association between umbilical cord pH and perinatal and long term outcomes: systematic review and meta-analysis. BMJ. 340: c1471. https://doi.org/10.1136/bmj.c1471; PMid:20466789 PMCid:PMC2869402

11. Ma X, Kong H, Wang F, Su Y, Chang Y, Xin H. (2026) SPP1 integrates trophoblast-endothelial crosstalk via the αVβ3-PI3K/Akt-MMP-9 axis to govern vascular remodeling in preeclampsia. Mol Biol Rep. 53(1): 699. https://doi.org/10.1007/s11033-026-11867-y; PMid:42060165 PMCid:PMC13132967

12. Miller D, Motomura K, Galaz J, Gershater M, Lee ED et al. (2022, Jan). Cellular immune responses in the pathophysiology of preeclampsia. J Leukoc Biol. 111(1): 237-260. https://doi.org/10.1002/JLB.5RU1120-787RR; PMid:33847419 PMCid:PMC8511357

13. O'Heney J, McAllister S, Maresh M, Blott M. (2022, Dec 16). Fetal monitoring in labour: summary and update of NICE guidance. BMJ. 379: o2854. https://doi.org/10.1136/bmj.o2854; PMid:36526275

14. Sinha SK, Mellody M, Carpio MB, Damoiseaux R, Nicholas SB. (2023, May 4). Osteopontin as a Biomarker in Chronic Kidney Disease. Biomedicines. 11(5): 1356. https://doi.org/10.3390/biomedicines11051356; PMid:37239027 PMCid:PMC10216241

15. Tardelli M, Zeyda K, Moreno-Viedma V, Wanko B, Grün NG, Staffler G et al. (2016, Sep 13). Osteopontin is a key player for local adipose tissue macrophage proliferation in obesity. Mol Metab. 5(11): 1131-1137. https://doi.org/10.1016/j.molmet.2016.09.003; PMid:27818939

16. Tossetta G, Campagna R, Fantone S, Di Simone N, Pompei V, Giannubilo SR et al. (2025, Nov). NNMT expression in preeclampsia: Analyses on placental tissues and cell lines. Placenta. 171: 111-120. https://doi.org/10.1016/j.placenta.2025.09.017; PMid:41033123

17. Vornic I, Buciu V, Furau CG, Gaje PN, Ceausu RA, Dumitru CS et al. (2024, Nov 13). Oxidative Stress and Placental Pathogenesis: A Contemporary Overview of Potential Biomarkers and Emerging Therapeutics. Int J Mol Sci. 25(22): 12195. https://doi.org/10.3390/ijms252212195; PMid:39596261 PMCid:PMC11594287

18. Zhao Y, Huang Z, Gao L, Ma H, Chang R. (2024, Jun 11). Osteopontin/SPP1: a potential mediator between immune cells and vascular calcification. Front Immunol. 15: 1395596. https://doi.org/10.3389/fimmu.2024.1395596; PMid:38919629 PMCid:PMC11196619