- Современный взгляд на цервиковагинальный дисбиоз, вызванный сочетанием бактериальный вагиноз ассоциированных бактерий и дрожжеподобных грибов рода Candida. (Обзор литературы и собственные данные)
Современный взгляд на цервиковагинальный дисбиоз, вызванный сочетанием бактериальный вагиноз ассоциированных бактерий и дрожжеподобных грибов рода Candida. (Обзор литературы и собственные данные)
HEALTH OF WOMAN. 2020.7(153): 74-83; doi 10.15574/HW.2020.153.74
Носенко Е. Н.
Одесский национальный медицинский университет
В статье приведены современные литературные данные о дефиниции и этиопатогенезе цервиковагинального дисбиоза, вызванного условно-патогенной микрофлорой, а также собственные данные проведенного сравнительного исследования эффективности лечения симптомного цервиковагинального дисбиоза, вызванного сочетанием бактериальный вагиноз ассоциированных микроорганизмов и грибов рода Cаndida, с помощью комбинированных препаратов, содержащих тернидазол, неомицин, нистатин и соль Na-метасульфобензоата преднизолона (Тержинан®) или метронидазол и миконазол.
Цель исследования: сравнение эффективности лечения симптомного цервиковагинального дисбиоза, вызванного сочетанием бактериальный вагиноз ассоциированных микроорганизмов и грибов рода Cаndida, с помощью комбинированных препаратов, содержащих тернидазол, неомицин, нистатин и соль Na-метасульфобензоата преднизолона (Тержинан®) или метронидазол и миконазол.
Материалы и методы. Под наблюдением находились 107 женщин репродуктивного возраста с симптомным цервиковагинальным дисбиозом, вызванным сочетанием бактериальный вагиноз ассоциированных микроорганизмов и грибов рода Cаndida, и 30 условно гинекологически и соматически здоровых лиц контрольной группы с цервиковагинальным эубиозом. Обследованные женщины с цервиковагинальным дисбиозом слепым методом были разделены на две группы: основная – 56 пациенток, получавших лечение интравагинальными таблетками Тержинан®, группа сравнения – 51 женщина, использовавшая вагинальные суппозитории, содержащие метронидазол и миконазол. Оценивали динамику клинических данных и состояние цервиковагинальной микробиоты методом ПЦР перед началом, через один и три месяца после окончания лечения.
Результаты. Открытый сравнительный анализ показал, что при топической терапии вагинальными таблетками Тержинан® через месяц после окончания лечения наблюдался положительный клинический эффект у 89,29% женщин и микробиологический эффект – у 91,07% пациенток, через три месяца – у 85,71% и у 89,29% пациенток соответственно, тогда как при топической терапии вагинальными суппозиториями, содержащими 750 мг метронидазола и 200 мг миконазола, – соответственно через месяц после окончания лечения такой эффект наблюдали в 68,73% и 72,55% случаев, через три месяца – в 62,75% и 66,67%.
Заключение. Топическая монотерапия вагинальными таблетками Тержинан® по сравнению с вагинальными суппозиториями, содержащими метронидазол и миконазол, демонстрирует клинические и микробиологические преимущества Тержинана® при лечении цервиковагинального дисбиоза, вызванного бактериальный вагиноз ассоциированной микрофлорой и дрожжеподобными грибами рода Candida.
Ключевые слова: цервиковагинальная микробиота, цервиковагинальный дисбиоз, условно-патогенные микроорганизмы, бактериальный вагиноз ассоциированные микроорганизмы, дрожжеподобные грибы рода Candida, Тержинан®, вагинальные суппозитории с метронидазолом и миконазолом, клиническая эффективность, микробиологическая эффективность, безопасность, отдаленные результаты.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Калугина ЛВ, Татарчук ТФ, Шакало ИН, Герман ДГ. Неспецифический вульвовагинит смешанной этиологии: местное лечение – терапия выбора. Репродуктивная эндокринология. 2016;1(27):94-100. https://doi.org/10.18370/2309-4117.2016.27.94-100
2. Maмчур ВИ, Дронов СН. Тержинан глазами фармаколога: инновационный подход к терапии вагинитов различного генеза. Медицинские аспекты здоровья женщины. 2015;9(95):50–57.
3. Мороз ВА. Фармакологические аспекты использования комбинированных противомикробных средств в лечении инфекций женской половой сферы. Дерматовенерология. Косметология. Сексопатология. 2010;1-2:184-191.
4. Носенко ЕН, Москаленко ТЯ, Смирнова ЕВ, Рутинская АВ. Комплексное лечение дисбиоза вагинальной экосистемы, вызванного условно-патогенной бактериальной и грибковой флорой. Медичні аспекти здоров’я жінки. 2018; 4(117): 41-49.
5. Пирогова ВІ, Шурпяк СО, Фейта ЮР, Малачинська МЙ, Кузь НМ. Порівняльне дослідження ефективності топічної терапії комбінованими препаратами змішаних вагінітів, асоційованих з цервіцитами. Здоровье женщины. 2018;6: 42-49.
6. Савичева АМ, Спасибова ЕВ. Действие комбинированного препарата Тержинан® на микроорганизмы, выделенные из урогенитального тракта женщин. Опыт in vitro. Журнал акушерства и женских болезней. 2017; LXVI;5:21-26. https://doi.org/10.17816/JOWD66521-26
7. Al-Nasiry S, Ambrosino E, Schlaepfer M, Morrй SA, Wieten L, Voncken JW, et all. The Interplay Between Reproductive Tract Microbiota and Immunological System in Human Reproduction. Front Immunol. 2020; 11: 378. Published online 2020 Mar 16. https://doi.org/10.3389/fimmu.2020.00378; PMid:32231664 PMCid:PMC7087453.
8. Amsel R, Totten PA, Spiegel CA, Chen KC, Eschenbach D, Holmes KK. Nonspecific vaginitis: diagnostic criteria and microbial and epidemiologic associations. Am J Med. 1983;74(1):14–22. https://doi.org/10.1016/0002-9343(83)91112-9.
9. Anahtar MN, Gootenberg DB, Mitchell CM, Kwon DS. Cervicovaginal microbiota and reproductive health: the virtue of simplicity. Cell Host and Microbe. 2018; 23:159–68. https://doi.org/10.1016/j.chom.2018.01.013; PMid:29447695.
10. Barrientos-Durбn A, Fuentes-Lуpez A, de Salazar A, Plaza-Dнaz J, Garcнa Julio. Reviewing the Composition of Vaginal Microbiota: Inclusion of Nutrition and Probiotic Factors in the Maintenance of Eubiosis. Nutrients. 2020 Feb; 12(2): 419. Published online 2020 Feb 6. https://doi.org/10.3390/nu12020419; PMid:32041107 PMCid:PMC7071153.
11. Beghini J, Linhares IM, Giraldo PC, Ledger WJ, Witkin SS. Differential expression of lactic acid isomers, extracellular matrix metalloproteinase inducer, and matrix metalloproteinase-8 in vaginal fluid from women with vaginal disorders. BJOG. 2015;122(12):1580–1585. https://doi.org/10.1111/1471-0528.13072; PMid:25196575.
12. De Seta F, Campisciano G, Zanotta N, Ricci G, Comar M. The Vaginal Community State Types Microbiome-Immune Network as Key Factor for Bacterial Vaginosis and Aerobic Vaginitis. Front Microbiol. 2019;10:2451. Published online 2019 Oct 30. https://doi.org/10.3389/fmicb.2019.02451; PMid:31736898 PMCid:PMC6831638.
13. Deng ZL, Gottschick C, Bhuju S, Masur C, Abels C, Wagner-Dobler I. Metatranscriptome Analysis of the Vaginal Microbiota Reveals Potential Mechanisms for Protection against Metronidazole in Bacterial Vaginosis. mSphere. 2018;3:e00262-18. https://doi.org/10.1128/mSphereDirect.00262-18; PMid:29875146 PMCid:PMC5990888.
14. Gajer P, Brotman RM, Bai G, Sakamoto J, Schьtte UM, Zhong X, et all. Temporal dynamics of the human vaginal microbiota. Sci Transl Med. 2012 May 2;4(132):132ra52. https://doi.org/10.1126/scitranslmed.3003605; PMid:22553250 PMCid:PMC3722878.
15. Hardy L, Jespers V, Van den Bulck M, Buyze J, Mwambarangwe L, Musengamana V, et al. The presence of the putative Gardnerella vaginalis sialidase A gene in vaginal specimens is associated with bacterial vaginosis biofilm. PLoS ONE. 2017;12(2):e0172522. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0172522; PMid:28241058 PMCid:PMC5328246.
16. Kalia N, Singh J, Kaur M. Microbiota in vaginal health and pathogenesis of recurrent vulvovaginal infections: a critical review. Ann Clin Microbiol Antimicrob. 2020; 19: 5. Published online 2020 Jan 28. https://doi.org/10.1186/s12941-020-0347-4; PMid:31992328 PMCid:PMC6986042.
17. Kroon SJ, Ravel J, Huston WM. Cervicovaginal microbiota, women’s health, and reproductive outcomes. Fertil Steril. 2018;110:327–336. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2018.06.036; PMid:30098679.
18. Lewis WG, Robinson LS, Gilbert NM, Perry JC, Lewis AL. Degradation, foraging, and depletion of mucus sialoglycans by the vagina-adapted Actinobacterium Gardnerella vaginalis. J Biol Chem. 2013;288(17):12067–12079. https://doi.org/10.1074/jbc.M113.453654; PMid:23479734 PMCid:PMC3636892.
19. Mason MJ, Winter AJ. How to diagnose and treat aerobic and desquamative inflammatory vaginitis. Sex Transm Infect. 2017 Feb; 93(1):8-10. https://doi.org/10.1136/sextrans-2015-052406; PMid:27272705.
20. Morrill S, Gilbert NM, Lewis AL. Gardnerella vaginalis as a Cause of Bacterial Vaginosis: Appraisal of the Evidence From in vivo Models. Front Cell Infect Microbiol. 2020; 10: 168. Published online 2020 Apr 24. https://doi.org/10.3389/fcimb.2020.00168; PMid:32391287 PMCid:PMC7193744.
21. Nelson TM, Borgogna J-LC, Brotman RM, Ravel J, Walk ST, Yeoman CJ. Vaginal biogenic amines: biomarkers of bacterial vaginosis or precursors to vaginal dysbiosis? Front Physiol. 2015;6:253. https://doi.org/10.3389/fphys.2015.00253.
22. Parnell LA, Briggs CM, Mysorekar IU. Maternal microbiomes in preterm birth: recent progress and analytical pipelines. Semin Perinatol. 2017;41:392–400. https://doi.org/10.1053/j.semperi.2017.07.010; PMid:28823578 PMCid:PMC6280966.
23. Petrova MI, Lievens E, Malik S, Imholz N, Lebeer S. Lactobacillus species as biomarkers and agents that can promote various aspects of vaginal health. Front Physiol. 2015;6:81. https://doi.org/10.3389/fphys.2015.00081; PMid:25859220 PMCid:PMC4373506.
24. Piyathilake CJ, Ollberding NJ, Kumar R, Macaluso M, Alvarez RD, Morrow CD. Cervical Microbiota Associated with Higher Grade Cervical Intraepithelial Neoplasia in Women Infected with High-Risk Human Papillomaviruses. Cancer Prev Res. 2016;9:357–366. https://doi.org/10.1158/1940-6207.CAPR-15-0350; PMid:26935422 PMCid:PMC4869983.
25. Ravel J, Gajer P, Abdo Z, Schneider GM, Koenig SS, McCulle SL, et all. Vaginal microbiome of reproductive-age women. Proc Natl Acad Sci. 2011;108 (Supplement 1):4680–4687. https://doi.org/10.1073/pnas.1002611107; PMid:20534435 PMCid:PMC3063603.
26. Schellenberg JJ, Patterson MH, Hill JE. Gardnerella vaginalis diversity and ecology in relation to vaginal symptoms. Res Microbiol. 2017;168(9–10):837–844. https://doi.org/10.1016/j.resmic.2017.02.011; PMid:28341009.
27. Severi E, Hood DW, Thomas GH. Sialic acid utilization by bacterial pathogens. Microbiology. 2007;153(9):2817–2822. https://doi.org/10.1099/mic.0.2007/009480-0; PMid:17768226.
28. Srinivasan S, Hoffman NG, Morgan MT, Matsen FA, Fiedler TL, Hall RW, et al. Bacterial communities in women with bacterial vaginosis: high resolution phylogenetic analyses reveal relationships of microbiota to clinical criteria. PLoS ONE. 2012;7:e37818. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0037818; PMid:22719852 PMCid:PMC3377712.
29. Torcia MG. Interplay among vaginal microbiome, immune response and sexually transmitted viral infections. Int J Mol Sci. 2019;20:E266. https://doi.org/10.3390/ijms20020266; PMid:30641869 PMCid:PMC6359169.
30. Van de Wijgert JHHM, Jespers V. The global health impact of vaginal dysbiosis. Res Microbiol. 2017;168:859–864. https://doi.org/10.1016/j.resmic.2017.02.003; PMid:28257809.
31. Witkin SS, Mendes-Soares H, Linhares IM, Jayaram A, Ledger WJ, Forney LJ. Influence of Vaginal Bacteria and d- and l-Lactic Acid Isomers on Vaginal Extracellular Matrix Metalloproteinase Inducer: Implications for Protection against Upper Genital Tract Infections. mBio. 2013;4(4):e00460-13; https://doi.org/10.1128/mBio.00460-13; PMid:23919998 PMCid:PMC3735189.
32. Zilnyte M, Venclovas Č, Zvirbliene A, Pleckaityte M. The cytolytic activity of vaginolysin strictly depends on cholesterol and is potentiated by human CD59. Toxins. 2015;7(1):110–128. https://doi.org/10.3390/toxins7010110; PMid:25590277 PMCid:PMC4303817.
33. Workowski K, Berman S. Centers for disease control and prevention. Sexually transmitted diseases treatment guidelines, 2010. MMWR. Recomm. Rep. 2010;59;12: 1–110.